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本生快訊——ELISA實(shí)驗操作注意事項及常見(jiàn)問(wèn)題解答
一、ELISA操作前準備工作
試劑盒的選擇
ELISA操作前,應做好實(shí)驗的設計、選擇適合自己檢測范圍和靈敏度的試劑盒、提前訂購和準備試劑及耗材、處理樣本等準備工作。
樣本處理
在收集標本前需有一個(gè)完整的計劃,需要清楚要檢測的成份是否足夠穩定。ELISA檢測提倡新鮮標本盡早檢測,對收集后當天就進(jìn)行檢測的標本,及時(shí)儲存在4℃備用,如有特殊原因需要周期收集標本,請取材后,將標本及時(shí)分裝后放在-20℃或-70℃條件下保存。因冰室與室溫存在一定溫差,蛋白極易降解,直接影響實(shí)驗質(zhì)量,所以避免反復凍融。
二、ELISA標準品溶解
標準品是試劑盒的檢測抗原的一個(gè)度量標尺,因此標準品的溶解、倍比稀釋和保存要特別注意以下細節:凍干標準品溶解按照說(shuō)明書(shū)的要求,準確復溶。在冰上操作標準品為佳,靜止5-10分鐘,輕輕搖勻后按照一次量分裝,在-20度或-70度保存。標準品嚴禁反復凍融。標準品的倍比稀釋?xiě)孪茸龊脺蕚?,如離心管的準備和編號以及稀釋液的準備;稀釋時(shí),應充分混勻;采用進(jìn)口或者硅化的EP管,減少蛋白吸附。在實(shí)驗孔內進(jìn)行倍比稀釋時(shí),注意操作規范,槍頭勿刮劃預包被的孔底。
三、ELISA操作中的洗滌
洗滌是ELISA實(shí)驗中是最多次數的操作,也是非常重要的步驟。不嚴格的洗滌容易出現洗不干凈或交叉污染現象,實(shí)驗重復效果差的現象。不管用多道加樣器、洗瓶、吸管,還是洗板機,嚴格按照說(shuō)明書(shū)操作不要減少步驟洗滌的洗滌體積、洗滌時(shí)間和洗滌次數。注意標準化操作將減少實(shí)驗誤差和不同實(shí)驗之間的誤差。操作者常出現洗板不干凈現象,請比照“手工洗板小貼士"操作:
a)洗液不要溢出孔外,以免污染相鄰的孔,特別是每次洗板的前兩遍,若高濃度的孔污染了低濃度的孔或空白孔,其造成的交叉污染的孔是洗不掉的,背景肯定會(huì )增高。
b)特別注意:設計實(shí)驗的時(shí)候要考慮實(shí)驗孔的位置,保證甩掉洗液時(shí),空白孔、低濃度孔或陰性對照組在上面或一側或分開(kāi)最好。同時(shí)注意甩掉洗液的動(dòng)作翻轉(從正上方旋轉120-150度)要迅速、干脆。甩板不要手腕左右搖擺、旋轉來(lái)甩液體!甩出后以直線(xiàn)方式補2-3次甩出液體。
c)用干凈的濾紙,不要用衛生紙,因為細小粉塵或者碎屑容易吸附到孔底,導致洗板不干凈,結果偏高或偏低,重復孔的數值也會(huì )相差很大。
d)每次拍板不要重復在一個(gè)地方拍,特別是洗去酶的步驟;拍板不宜過(guò)輕,否則拍不干凈,拍板很用力不會(huì )對蛋白有什么影響。但注意不要太重,以至把板條給拍斷。每次洗板后輕叩幾下,最后一次一定要扣干凈。
e)不能減少洗液體積、洗板時(shí)間和次數。洗板時(shí)間太短,洗板效果不佳。延長(cháng)洗板時(shí)間和增加洗板次數可以使背景更干凈。
四、ELISA的標準曲線(xiàn)如何擬合?
一般情況按照說(shuō)明書(shū)推薦方法擬合標準曲線(xiàn)。標準曲線(xiàn)可以由酶標儀附帶軟件自動(dòng)生成,也可手動(dòng)制作。標準曲線(xiàn)呈“S"形曲線(xiàn),兩端趨于水平,中間趨于線(xiàn)性,中間部分為較佳的檢測范圍。當標準品的量超過(guò)與包被抗體結合的量,此時(shí)標準品已飽和,再增加標準品的量,其OD值不再變化,故當標準品達到一定濃度后,曲線(xiàn)就趨于水平。一般廠(chǎng)商給出的濃度范圍落在中間線(xiàn)性范圍,根據標準曲線(xiàn),可以測出樣本的濃度。按照科學(xué)分析方法,如果存在“奇異點(diǎn)"或者“污點(diǎn)",直接采用線(xiàn)性分析不是很好,要對擬合標準曲線(xiàn)的幾個(gè)點(diǎn)進(jìn)行取舍,同時(shí)也可改用雙對數直線(xiàn)擬合或者四因素曲線(xiàn)擬合。
五、常見(jiàn)問(wèn)題
1、ELISA試驗出現非常弱的結果,常見(jiàn)有7種原因,其解決方法如下:
1)可能原因:溫育的時(shí)間或者溫度不夠;
解決方法:校正溫育箱溫度。
2)可能原因:顯色反應時(shí)間太短;
解決方法:校正定時(shí)鐘準確定時(shí)。
3)可能原因:所用配制緩沖液的蒸餾水有問(wèn)題;
解決方法:使用新鮮合格的蒸餾水。
4)可能原因:加入抗體/酶的稀釋液濃度太低;
解決方法:按照說(shuō)明書(shū)保存試劑盒和準確配制工作液。校正移液器,吸嘴要配套,裝吸嘴時(shí)要緊密。
5)可能原因:酶標儀濾光片不正確;
解決方法:檢查酶標儀使用的濾光片。
6)可能原因:試劑盒沒(méi)有充分平衡;
解決方法:試劑室溫平衡至少20分鐘,確保所有試劑已平衡至室溫。
7)可能原因:不正確的試劑儲存方式;
解決方法:按照說(shuō)明書(shū)要求保存試劑盒。
2、試驗的標準曲線(xiàn)和測定的重復性差,這是什么原因造成的?
答:試驗的標準曲線(xiàn)和測定的重復性差,這是典型的由測定操作引起的問(wèn)題,常見(jiàn)原因如下:
a)可能原因:加樣本及試劑量不準;孔間不一致;
解決方法:校正移液器,吸嘴要配套,裝吸嘴時(shí)要緊密。
重復某一樣品時(shí),加樣時(shí)間盡可能與第一次接近;
重復測定標本,操作條件、人員等應盡可能與上次保持一致,以排除這些因素造成的不一致的可能性;
樣品稀釋前應充分混勻。
b)可能原因:加樣過(guò)快,孔間發(fā)生污染;
解決方法:重復測定標本,操作條件、人員等應盡可能與上次保持一致,以排除這些因素造成的不一致的可能性;加樣不要過(guò)快。
c)可能原因:加錯樣本;
解決方法:檢查記錄和試劑,是否加錯樣本。
d)可能原因:加樣本及試劑時(shí),加在孔壁上部非包被區;
解決方法:加樣槍頭不要貼壁。
e)可能原因:不同批號試劑盒中組分混用;
解決方法:不同批號試劑盒中組分不可混用。
f)可能原因:溫育時(shí)間、洗板、顯色時(shí)間不一致;
解決方法:檢查時(shí)間是否一致。
g)可能原因:孔內污染雜物;
解決方法:離心樣品,排除雜物。
h)可能原因:試劑/樣品沒(méi)有混勻;
解決方法:充分混勻樣品和試劑。
i)可能原因:血清標本未*凝固即加入,反應孔內出現纖維蛋白凝固或殘留血
細胞,易出現假陽(yáng)性反應等。
解決方法:待血清標本*凝固后做試驗。
3、 試驗結果白板,而且陽(yáng)性對照不顯色,應如何分析和查找原因?
答:試驗結果白板,而且陽(yáng)性對照不顯色,常見(jiàn)原因如下:
a)可能原因:漏加或者誤加試劑;
解決方法:檢查試驗記錄和剩余試劑。每次加液前均應核對標簽。
b)可能原因:試劑過(guò)期;
解決方法:使用有效期內的產(chǎn)品。
c)可能原因:洗板液配制中出現問(wèn)題,如量筒不干凈含HRP酶抑制物(疊氮鈉
等);
解決方法:使用干凈的器皿,正確配制試劑。
d)可能原因:溫育的時(shí)間或溫度不夠;
解決方法:校正溫育箱溫度。
e)可能原因:標準品失活或者丟失;
解決方法:標準品正確保存、溶解和混勻。
f)可能原因:抗體失活或者丟失;
解決方法:更換抗體或者提高抗體濃度
g)可能原因:酶失活或者丟失
檢查方法:把工作濃度的酶再稀釋20-100倍,取5uL加入50ul的顯色底物,終止后顯色是否能達到1.0左右,此為酶的粗略估計。
解決方法:更換酶或者提高酶的濃度。
h)可能原因:顯色底物失活
檢查方法:加少量的工作濃度的酶,TMB是否很快顯色。
解決辦法:更換顯色底物.
4. 試驗結果空白背景高,這是什么原因造成的?
答:試驗結果空白背景高,常見(jiàn)原因如下:
a)可能原因:洗板不干凈;
解決方法:充分洗滌,*拍干;洗板要防止交叉污染;濃縮洗液準確配制;吸嘴盡可能一次性使用;加樣或加酶拍板的濾紙應棄去不用,不要反復使用,否則易造成污染。
b)可能原因:顯色液變質(zhì)或者試劑過(guò)期;
解決方法:檢查試劑盒有效期。
c)可能原因:試劑稀釋有誤,如加酶的濃度過(guò)高;
解決方法:請按說(shuō)明書(shū)所示稀釋倍數配制;
d)可能原因:蒸餾水受酶等污染;
解決方法:使用新鮮蒸餾水;
e)可能原因:試劑混用;
解決方法:不同批號試劑勿混用。
f)可能原因:培養箱溫度超過(guò)37℃或反應時(shí)間過(guò)長(cháng)。
解決方法:顯色反應時(shí)間適當縮短。
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